范文一:血培养标本采集的要点
采血指征
一般患者出现以下一种体征时可作为采血的重要指征:发热(≥38℃)或低温(≤36℃),寒战,白细胞增多(计数大于10.0×109/L,特别有“核左移”时),皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭,血压降低,C反应蛋白升高及呼吸加快,血液病患者出现粒细胞减少,血小板减少等,或同时具备上述几种体征而临床可疑菌血症应采集血液培养。新生儿可疑菌血症,应该同时做尿液和脑脊液培养。对入院危重感染患者应在未进行抗菌药物治疗之前,及时做血培养。
皮肤消毒程序
血培养为防止皮肤寄生菌污染,可使用消毒剂(碘酊或碘伏)对皮肤进行严格仔细的消毒处理,最大限度地减低皮肤污染。感染性心内膜炎,特别是心脏瓣膜修复术的感染,可能由皮肤寄生的微生物引起(例如:表皮葡萄球菌或棒杆菌属)。因此,在采集过程中血培养的污染一定要减小至最低程度。用做培养的血液均不应该在静脉或动脉的导管中抽取,除非静脉穿刺无法得到血液或用来评价与导管感染相关性指标。如果抽取了导管血,也应同时在其他部位穿刺获取非导管内静脉血液进行血培养。
皮肤消毒严格执行以下三步法:①70%酒精擦拭静脉穿刺部位30 s以上;②1%~2%碘酊作用30s或10%碘伏60s,从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达3 cm以上;③70%酒精脱碘:对碘过敏的患者,用70%酒精消毒60 s,待酒精挥发干燥后采血。
培养瓶消毒程序
①70%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞,作用60 s;②用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞子表面残余酒精。
静脉穿刺和培养瓶接种程序
①在穿刺前或穿刺期间,为防止静脉滑动,可戴乳胶手套固定静脉,不可接触穿刺点;②用注射器无菌穿刺取血后,勿换针头(如行第二次穿刺,应换针头)直接注入血培养瓶,或严格按厂商推荐的方法采血;③血标本接种到培养瓶后,轻轻颠倒混匀以防血液凝固。立即送检,切勿冷藏。
采血量:成人采血量是5~10 ml,儿童3~5 ml。血液和肉汤之比为1:5至1:10。
血培养次数和采血时间
采血培养应该尽量在使用抗菌药之前进行,在24 h内采集2~3次做血培养(一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份血培养)。入院前两周内接受抗菌药物治疗的患者,连续3天,每天采集2份。可选用能中和或吸附抗菌药物的培养基。对间歇性寒战或发热应在寒战或体温高峰到来之前0.5~1 h采集血液,或于寒战或发烧后1 h进行。
特殊的全身性和局部感染患者采血培养的建议:①可疑急性原发性菌血症、真菌菌血症、脑膜炎、骨髓炎、关节炎或肺炎,应在不同部位采集2~3份血标本;②不明原因发热,如隐性脓肿,伤寒热和波浪热,先采集2~3份血标本,24~36 h后估计体温升高之前(通常在下午)再采集2份以上;③可疑菌血症或真菌菌血症,但血培养持续阴性,应改变血培养方法,以获得罕见的或苛养的微生物;④可疑细菌性心内膜炎,在1~2 h内采集3份血标本,如果24 h后阴性,再采集3份以上的血标本。
标本运送
采血后应该立即送检,如不能立即送检,需室温保存或置35~37 ℃孵箱中,切勿冷藏。
来源:?齐鲁医学检验 齐鲁齐鲁?齐鲁医学检验
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范文二:血标本的采集和培养
血标本的采集和培养
(一)血培养采集的时间
要求:对怀疑菌血症、真菌血症的患者,在考虑使用抗菌药物之前,应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间采集2套(每套包括1只普通血培养瓶及1只厌氧血培养瓶)以上血培养标本。
说明:实验数据表明细菌入血后约1小时,寒战和发烧开始出现2小时内。此时为采集血培养标本进行病原菌培养的最佳时机。在不同的时间点采血只有在以下情况才有必要:疑似感染性心内膜炎或其他血管内(如导管相关性感染)感染患者的连续性菌血症。
(二)血培养的采集次数
要求:对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者,推荐同时采集2~3套(不同部位)血培养标本。(即双瓶双臂同时采集血培养标本。)
婴幼儿患者,推荐同时采集2次(不同部位)血培养标本。
说明:成年人的单瓶血培养结果不可信,因为采血量不足,从而使培养结果难以解释。血培养不能在二至五天内进行重复,因为在抗生素治疗开始后血液中的细菌不会立即清除。Cockeril研究证明,来自三份血培养的病原菌分离率第一份血培养为65%,两份血培养为80%,三份血培养为96%。
提倡全自动血培养仪器的使用,可以更早的发现移植病人和插管病人的败血症。通常情况菌血症或真菌血症的患者可通过临床表现来判断疗效,无需复查血培养或者连续监测血培养。然而有两个例外:第一是感染性细菌性心内膜炎病人,对于他们的菌血症或真菌血症是否被清除可被用于评估和指导治疗;第二是与感染性心内膜炎无关的金黄色葡萄球菌血症,对其阳性血培养的48至96小时追踪可以很好的预测复杂的金黄色葡萄球菌血症。
(三)采血量
要求:成年患者推荐的采血量为每套不少于10ml,每瓶不少于5ml。
婴幼儿患者推荐的采血量,每瓶不少于2ml。(少于病人总血容量的1%) 说明:血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。成人血培养采血量在2~30ml之间,病原菌检出率与采血量成正比例增长,每增加1ml的血液,病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者同样有数据表明检出率与血容量成正相关,然而还有数据显示儿童患者血液中病原菌浓度较高,血培养量无需等同于成人。实验室必须按照血培养瓶厂家的建议,采集足够的血液标本。对血液病患者或者血容量相对较低的患者建议使用儿童瓶来减少血液的采集量增加病原菌的检出率。
(四)血液标本在需氧瓶和厌氧瓶中的分配
要求:一个需氧瓶和一个厌氧瓶为一套血培养,作为常规血培养的组合。 说明:有研究表明,与成对使用需氧血培养瓶相比,使用成对的需氧/厌氧血培养瓶能分离到更多的葡萄球菌、肠球菌属和厌氧菌。当被用来做培养的采血量少于推荐值时,血必须首先接种需氧瓶;然后将剩余的血液接种入厌氧瓶。因为多数菌血症是由需氧和兼性需氧细菌造成的,而这些细菌从需氧瓶中更好的被分离。除此之外,病原性真菌跟严格的需氧菌(如假单胞菌和嗜麦芽寡养单胞菌)一样,几乎全部是从需氧培养瓶中分离到的。
二.血培养标本的采集
(一)皮肤消毒
要求:推荐使用碘酊、洗必泰或碘伏作为皮肤消毒剂。
说明:消毒剂需要有足够的作用时间以保证消毒效果(碘酊作用1min;碘伏作用1.5~2min)。
洗必泰的作用时间和碘酊一样,但是没有过敏反应,因此在静脉穿刺完成后不需要擦去,但不能用于小于2个月婴儿皮肤的消毒。
(二)采集部位
要求:推荐从外周静脉采集血液标本。
说明:不建议采集:1.动脉血,因其诊断价值没有比静脉血更大;2.静脉留置导管,因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管内采血,也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果的判读提供解释。
(三)采集方法
要求:1.在采血之前,血培养瓶的橡皮塞需使用70%异丙醇酒精消毒并干燥,然后再进行穿刺部位的皮肤消毒。
2.严格按照皮肤消毒步骤操作(70%异丙醇酒精、含碘消毒剂、70%异丙醇酒精),并等待足够的消毒时间。
3.严格无菌操作,不允许在皮肤消毒后用于手接触静脉,除非带有无菌手套。
4.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头,采用真空采血装置能降低污染率。
说明:无论采用何种采血方法,血培养可接受的污染率通常是≤3%。
三.血培养标本的运送
要求:1.采集后的血培养瓶应在1小时之内送往实验室。
2.血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻。
说明:延迟血培养瓶放入全自动培养检测系统可延迟或妨碍细菌生长的检测。不建议将血培养瓶放置于室温超过几个小时。血培养标本冷藏或冷冻会将一些微生物杀灭,将装着液体的容器冰冻也会使容器破裂。溶解离心的血培养标本也不该放置超过八小时;超过这个时间会使特殊病原菌的降低分离率或生长延缓。
四.几种特殊要求的血培养
(一)真菌血培养
要求:怀疑真菌菌血症的患者采用需氧血培养瓶采集标本。
说明:研究证明,与厌氧瓶相比,酵母菌在需氧瓶中能够更好的分离。多数酵母菌和酵母菌样真菌能在孵育的2至5天被检测到,而一些酵母菌(如光滑念珠菌,新型隐球菌)则需要更长时间的孵育。虽然双相真菌可以在多数商业化制备的需氧血培养上生长,但检测可能需要2至4周到时间。因此自动化血培养系统不能用于双相真菌的检测。一旦怀疑为双相真菌或丝状真菌感染,血液需经溶解-离心浓缩并接种于琼脂培养基上。
(二)分枝杆菌血培养
要求:分枝杆菌血培养必须用特殊的商品化分枝杆菌血培养瓶。所有培养都必须孵育至少4周。培养温度为25~30℃。
说明:虽然分枝杆菌并不是需要特别复杂营养的微生物,但是从血标本中优化分离分枝杆菌,需要在肉汤培养基中补充脂肪酸(如,油酸),白蛋白,和二氧化碳。一些分枝杆菌种属(如,日内瓦分枝杆菌,嗜血分枝杆菌)需要像分枝菌素,血红素,血红蛋白或枸橼酸铁铵这样的添加剂。
(三)导管相关的血流感染(CRBSI)
1.短期外周导管
要求:通过静脉穿刺获得病人的两套外周血培养(双瓶双侧)。无菌操作拔去导管并用Maki半定量方法培养。
培养结果的解释: — 假如一套或多套血培养阳性,而且导管片段培养也是阳性(半定量≥15个菌落)并且为同一种菌:提示CRBSI。
— 假如一套或多套血培养阳性,而导管片段培养阴性:不可以下定论;但是如果是金黄色葡萄球菌或者念珠菌属,而且排除其他任何可鉴别来源的感染,则提示CRBSI。
— 假如血培养阴性,而导管片段培养阳性,尽管有菌落计数,仍然提示导管定植而非CRBSI。
— 假如血培养阴性,而且管片段培养也是阴性,则不可能是CRBSI。 2.中心静脉导管及静脉留置口(VAP)
(1)方法一
要求:对怀疑患CRBSI的病人采集至少两套血培养,其中至少一套采集自外周血静脉穿刺并做好标记,另一套应该从导管口或VAP隔膜无菌采集,采集时间应与外周血培养相近,并做好标记。
培养结果的解释:
如果两套血培养阳性且为同一种细菌,并排除其它任何来源的感染,提示为CRBSI。
如果两套血培养阳性且为同一种细菌,而且来自导管的血培养报阳时间比外周静脉血培养早120分钟,提示为CRBSI。如果排除其它任何来源的感染,两套血培养报阳差异时间小于120分钟,并且为同一种细菌耐药谱一致,也提示可能为CRBSI。
如果两套血培养阳性,而且来自导管血培养的细菌数量为至少5倍于外周静脉血培养的CFUs/ml,如果排除其它任何来源的感染,提示可能为CRBSI。(适用于手工定量血培养系统,比如溶解/离心浓缩方法)。
假如只有从导管抽血的那套是阳性的:不能得出CRBSI的结论。提示导管定植菌或者是培养采集过程中的污染。
如果仅是来自外周静脉的血培养为阳性,不能定义为CRBSI,但如培养结果为金黄色葡萄球菌或念珠菌属,排除其它任何来源的感染时则提示可能为CRBSI。
如果两套血培养均为阴性,不是CRBSI。
(2)方法二
要求:通过独立的外周静脉穿刺点无菌采集两套血培养。
拔出可疑的导管,将导管片段的远端5cm无菌剪切并将其交付于实验室进行Maki’s半定量滚碟法培养或振荡或超声之后进行定量培养。
培养结果的解释:
如果一套或多套血培养阳性,同时导管末端培养为阳性,而且根据鉴定结果和药敏谱两种培养为同一种细菌,提示可能为CRBSI。
如果一套或多套血培养阳性,同时导管末端培养为阴性:如培养结果为金黄色葡萄球菌或念珠菌属且缺乏其它感染的来源是则提示可能为CRBSI,其确认可能要求额外的血培养阳性结果且是同一种细菌作为结果支持。
假如血培养阴性而导管末端培养阳性,提示导管定植菌,不是CRBSI。 如果两套血培养为阴性,导管末端培养也为阴性,不是CRBSI。
(四)感染性细菌性心内膜炎
1.急性感染性心内膜炎:
要求:在经验性抗生素用药前30min之内采集血培养。最初采集3套血培养。假如这些血培养在24小时之内结果是阴性的,再采集2套血培养,总共是5套。
2.亚急性感染性心内膜炎:
要求:需在30分钟至1小时之内连续抽取数套血培养,可以证明持续性菌血症,并为临床提供更多有价值的信息。最初采集3套血培养。假如这些血培养在24小时之内结果是阴性的,再采集2套血培养,总共是5套。
说明:在采集怀疑有感染性心内膜炎病人血培养时皮肤消毒是相当重要的。在具有亚急性感染性心内膜炎或人工心脏瓣膜的病人,主要的病原菌是皮肤菌群,比如凝血酶阴性的葡萄球菌,因此,特别重要的是血培养需要通过静脉穿刺获得,而不是通过留置于血管内的装置。来源于导管的血培养增加了的污染的危险因素,从而导致感染性心内膜炎的错误结论。
有研究表明:造成感染性心内膜炎“培养阴性”的另一个可能原因是被称为“营养变异的链球菌”的存在。因此特别需要强调需氧和厌氧瓶的同时采集。
建议采用正确的皮肤消毒,从不同的外周静脉部位分别采集血培养,不能从留置的导管采血。
(五)真菌感染性心内膜炎
要求:可参见细菌感染性心内膜炎。
说明:对细菌性心内膜炎诊断的许多技术同样也可用于诊断真菌性心内膜炎。许多常规的手工或自动化血培养系统的培养基可以满足酵母菌的生长需要,
如念珠菌的生长。假如这些常规血培养是阴性的,那么使用特殊的“真菌血培养”是需要的。
范文三:血培养标本采集方法的改进
血培养标本采集方法的改进 420职业与健康》2006年3月第22卷第6期OCCUPATIONANDHEALTHVo1.22No.6MaMa,2006
春末秋初的肉品卫生工作.各地,各种性质经营之熟肉制品,其 超标情况未有明显差异L3J.对熟肉制品生产经营单位进行卫生 学调查,其卫生条件基本相似.大部分卫生条件较差,缺乏防腐 设备,用具不洁,生熟不分现象也较多,加工过程用手接触机会 多,出售不用工具等.这都是造成熟肉制品污染超标的因素,应 切实抓好.
熟肉制品出锅后的防止污染是十分重要的.出锅后经营时 间最短者1h,最长48h.4h前样品不到1/3,4h后者达70%以 上.大部分未遵守4h回锅制的要求.3类肉制品出锅4h前后 3类菌合计超标率差异有非常显着性(:l1.42,P<0.01),究 其原因,主要是由于加工经营过程卫生条件差,出锅后造成二次 污染所致.
大肠菌与杂菌污染成正比关系,与致病菌污染关系不大.4 h前后均有致病菌污染.酱卤肉类样品最多,3种指标均有超 标,是肉品卫生的重点.其他2类肉品较少,但也有致病菌检 出.因此,熟肉品卫生应注意,坚持4h回锅制,煮熟凉透,防止 出锅后的二次污染.
4参考文献
[1]卫生部.食品卫生检验方法(微生物学部分).北京:中国标准出版社. 1976.
[2]OS/T4789.2—2003.食品卫生微生物学检验.
[3]武汉医学院.营养与食品卫生学.北京;人民卫生出版社,1982. 102—107.
(收稿:20O5—06—20J
(本文编辑:张军)
血培养标本采集方法的改进
刘书哲,胡彩梅,岳芳芳
(河南省肿瘤医院,郑州市450008)
摘要目的改进血培养标本采集方法,提高血培养结果的准确性.方法对两种血培养
标本采集方法进行比较,分析其
优缺点.结果采用优快双相血培养瓶(封闭型的血培养瓶)污染机会少,培养结果准
确,很少做培养对照,医师可在短时间
内做出诊断.结论改进的血培养标本采集方法可以推广使用. 关键词血培养;采集;标本;改进
中国图书资料分类号:R446文献标识码:B文章编号:1004—1257(2006}06—0420
—02
医生在对病人进行临床诊断和治疗的过程中,往往需要借 助对病人的血液,体液,分泌物,排泄物以及组织细胞等标本进 行检验,以获得反映机体功能状态,病理变化或病因等的客观资 料…1.肿瘤病人机体抵抗力相应的降低,对不明原因的高热, 如:多种细菌传染病,肺炎,泌尿系统感染,以及发热待查等,血 培养结果是临床诊断和治疗的主要依据.针对血培养标本的培 养结果,往往抽3次做培养对照,需要时间长,影响医师在短时 间内做出诊断.为了保证所取标本的准确性,我们对血培养标 本采集方法加以改进,现将改进方法介绍如下.
1对象与方法
1.1对象本组柏例病人,其中2o例为近期我院采用上海奥 普生物医药有限公司生产的优快双相血培养瓶(新血培养瓶)进 行了血培养的结果中随意抽取的病人,其检验结果和在没有采 用优快双相血培养瓶以前用我院自制的血培养瓶(旧血培养瓶) 培养的结果中随意抽20例病人的检验结果作对照. 1.2培养瓶规格旧血培养瓶:旧血培养瓶是一小三角烧瓶密 封瓶(医院自制),瓶口除棉花塞外,另加两层纱布密封,再用线
绳系紧,外覆盖一层封瓶纸,内盛培养基,经高压灭菌后保存7 d.新血培养瓶:采用上海奥普生物医药有限公司生产的优快双 相血培养瓶,可在室温阴暗处保存,保质期为18个月. 1.3培养方法我院细菌室以Mski法进行培养l2_2.采集后的 血液标本均在37?培养48h后进行定量计数[. 2采集血培养标本的方法
2.1物品准备无菌治疗盘内盛:安尔碘I型皮肤消毒剂(生 产厂家:第二军医大学),无菌棉签,一次性1Oml注射器,血培 养瓶,化验单(标明病室,床号,姓名,性别,病案号),无菌手套, 作者简介:刘书哲.女,主管护师.主要从事l临床护理工作. 止血带,95%乙醇,酒精灯和打火机等.
2.2对照组采集血标本的方法查对医嘱,贴化验单附于旧血 培养瓶的瓶体上.洗手,携用物至床旁,核对病人的病室,床号, 姓名,性别,病案号,并解释采血的目的,以取得配合,点燃酒精 灯,先将封瓶纸松开.选择合适的静脉穿刺点,在穿刺点上方约 6em处系止血带(系好的止血带尾端应远离穿刺点,避免穿刺 点被污染),用安尔碘I型棉签消毒皮肤,嘱病人握拳,使静脉充 盈,便于穿刺及抽血,带手套,预防院内交叉感染,按静脉穿刺法 穿刺血管,见回血后抽取所需血量,一般血培养采血5.松开 止血带,嘱病人松拳,迅速拔出针头,用干棉签按压穿刺点1,2 min,避免出现皮下血肿,血液抽出后去掉针头,将培养瓶棉塞取 出,并迅速在酒精灯火焰上消毒瓶El,将血液注入瓶内,轻轻摇 匀,再将棉塞经火焰消毒后盖好,扎紧封瓶纸送检.检查病人的 穿刺部位,整理用物,归还原处,脱掉手套,标本送检,洗手,记录 采血时间.
2.3实验组采集血标本的方法查对医嘱,贴化验单附于优快 双相血培养瓶的瓶体上.洗手,携用物至床旁,核对病人的病 室,床号,姓名,性别,病案号,并解释采血的目的,以取得配合, 点燃酒精灯.选择合适的静脉穿刺点,在穿刺点上方约6cm处
系止血带,常规消毒皮肤,嘱病人握拳,使静脉充盈,便于穿刺及 抽血,带手套,预防院内交叉感染,按静脉穿刺法穿刺血管,见回 血后抽取所需血量,一般血培养采血8,lOml.松开止血带,嘱 病人松拳,迅速拔出针头,用干棉签按压穿刺点l一2rain,避免 出现皮下血肿,血液抽出后更换针头,在酒精灯火焰旁无菌区注 射针头刺入血培养瓶内,将血液沿血培养瓶壁徐徐注入瓶中,轻 轻摇匀.检查病人的穿刺部位,整理用物,归还原处,脱掉手套, 标本送检,洗手,记录采血时间.
3血培养标本采血次数的比较
职业与腱康》2006年3月第22卷第6期
OCCUPATIONANDHEAIVo1.22No.6March,2006
血培养结果是临床诊断和治疗的主要依据.针对血培养标 本的培养结果,根据表1所见,对本组4o例病人做血培养标本 的采集次数进行分析.对照组2o例病人做血培养,采3次血培 养作对照的13例,占65%;采2次血培养作对照的5例,占 25%;采1次血培养作对照的2例,占10%:实验组2o例病人做 血培养,采3次血培养作对照的5例,占25%;采2次血培养作 对照的7例,占35%;采1次血培养作对照的8例,占40%;从以 上数据看,对照组的病例中采血的次数多,需要时间长,影响医 师在短时间内做出诊断.实验组的病例中采血的次数少,采血 总量少,需要时问短.
表1对照组与实验组的标本采集次数的比较[例(%)] 4血培养标本采集的改进
实验组一般采血8—1OrrIl,对照组一般采血5rrIl,保证所取 标本的准确性,采血方法同前.但实验组采集方法是血液抽出 后更换针头,在酒精灯火焰旁无菌区注射针头刺入新血培养瓶 内,将血液沿血培养瓶壁徐徐注入瓶中,以免污染血培养标本. 5血培养标本采集时的注意事项
采血应注意的事项有:?采血前先皆知病人采集血标本的 目的和采血量,以取得配合.?采集血标本时,应在病人发热初 期或发热高峰时用一次性1OlIll注射器采血,有可能时应多次 采血做血培养对照.?严格无菌操作,不得在输血,输液的针头 处采血,最好在对侧肢体采集.血液抽出后更换针头,将血液沿 血培养瓶壁徐徐注入瓶中.寒颤的病人应在寒颤时体温上升期 和体温下降后各采1份作对照检查.?采血标本严防溶血,针 42l
头注射器均应干燥.?注意棉签不要触及其他部位,采集血液 作血培养时应严防污染.?应采用一次性注射器,采集血标本 后,不应将注射器活塞向后抽,以免血液被空气内的细菌污染. ?采集血培养标本时,应防污染.除严格执行无菌技术操作外, 抽血前,应检查培养瓶的无菌性.实验组的血培养瓶使用时将 塑料盖剔去,用安尔碘I型彻底消毒瓶盖,避免在酒精灯火焰上 消毒瓶VI,更换针头后将抽出的血液注入瓶内,摇匀送检. 6讨论
血培养是医学临床化验室中最重要的检验项目之一.几乎 所有的发热性疾病,如多种细菌传染病,肺炎,泌尿系统感染,以 及发热待查等,均可能因细菌进入血液而引起菌血症,败血症. 这是严重而且危急的全身性感染,随时会夺去病人的生命,故急 需尽快查明血中的病原菌,因此,准确及时的血培养结果具有极 其重要的意义.一旦证实血标本中存在细菌肘,可立即与送验 医师联系告知初步结果,在菌种完成鉴定与药敏实验后,尽快做 出最终报告,以及时给予针对性的抗菌治疗.我院采用优快双 相血培养瓶,是封闭型的血培养瓶,污染机会少,准确,培养结果 出报告时间相应的短,医师在短时间内做出诊断.有利于及时 治疗,有利于病人尽早得到康复.改进的血培养标本采集方法 可以推广使用.
7参考文献
[1]殷磊.护理学基础.第3版.北京:人民卫生出版社,2O04.387—388. [2]刘大为,主编.危重病医学主治医生600问.北京:中国协和医科大学 出版社,1998.408—422.
[3]邴螈.雷红.3种敷料覆盏中心静脉嚣管穿刺部位细菌定植的比较.中 华护理杂志,20O5,39(5):380.
(收稿:2005—06—13)
(本文编辑:张军)
尿中微量汞的氢化物发生一原子吸收分光光度测定法
闰善信,刘勇
(辽宁省瓦房店市疾病预防控制中心,116300)
摘要目的快速准确检测尿中微量汞.方法氢化物发生一原于吸收分光光度法.结果r=0.9986,检出限
0.3t'e,/L,RSD2.29%一8.66%,回收率86.47%,104.6%.结论方法具有灵敏度高,选择性强,简便,快速的优点,适用于
基层实验室.
关键词氢化物发生原子吸收分光光度法;尿;微量汞
中国图书资料分类号:R115文献标识码:B文章编号:1004一lzs712oo61o6—0421
—02
笔者对本单位实验室应用氢化物发生一原子吸收分光光度 测定法测定尿中微量汞的试验结果进行如下报告.
1试验部分【】-2
1.1原理用硫酸和高锰酸钾于5O?条件下消化尿样,使结 合态汞转变为汞离子.用硼氢化钾和汞离子形成气态氢化物 后,用原子吸收测定吸收峰高,通过标准曲线求汞含量. 1.2仪器及试剂wY)【一9004原于吸收分光光度计(沈阳仪通 分析仪器有限公司);WI-IG一102A2型流动注射氢化物发生器 (北京瀚时制作所);汞空心阴极灯(北京有色金属研究所);汞标 准液(北京应天意标准样品公司提供);高锰酸钾溶液(50L); 作者简介:闰善倍,男,主管检验师.主要从事理化检验工作.
4%硫酸(优极纯配制,加入少量高锰酸钾呈微紫色);0.5%硼氢 化钾溶液(介质0.1%NaOH,临用时现配效果好),l%盐酸(优极 纯配制);盐酸羟胺溶液(200L).
1.3样品处理尿样振摇均匀后,取lOml于容量瓶中,同时做 空白.向样品和空白管中分别加入8IIll高锰酸钾溶液和4ml 硫酸,放置5min,混匀,于5o?水浴保温2h,用盐酸羟胺溶液 还原过剩的高锰酸钾及二氧化锰,用4%硫酸溶液定容到 10oml.
1.4标准系列制备配置1IIll的汞标准液后,取4个100 IIll容量瓶,分别加入1,2,3,4ml的汞标准液后用已配置好的 4%的硫酸定溶至100ml.此时分别是1O,2o,3o,40t,.r,/L.
1.5样品测定波长:253.7rim;灯电流1.38mA;光谱通带0.2
范文四:采集血培养流程
采集血培养流程
洗手(可手消)、戴口罩
↓
75%酒精消毒培养瓶的橡胶塞,待干60秒
(无菌纱布或棉签清洁表面残余酒精)
↓
75%酒精消毒穿刺部位,由内向外划圈,作用(待干)30s
↓
以碘酊或碘伏消毒穿刺部位(碘酊作用30s,碘伏作用1.5-2min)
从穿刺点由内向外划圈,消毒范围为8×10cm
↓
用75%酒精消毒作用60s,待干
↓
持穿刺针按常规方法刺入静脉,另一头刺入相应血培养瓶内
成人采血量20-30ml,婴幼儿1-5ml
(严格无菌操作,不允许在皮肤消毒后用手接触静脉,除非带有无菌手套)
↓
血液注入血培养瓶后轻摇瓶子
↓
用75%酒精重新消毒血培养瓶橡皮塞并盖好塑料盖
↓
立即送检
(切忌将培养瓶冷藏或冷冻)
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洗手、摘口罩
备注:
最佳采血时机
1、对间歇性寒战,采集血培养标本应该在估计寒战或体温高峰到来之前采血。
2、采集血液标本应在抗菌药物使用之前,对已使用抗菌药物治疗的患者,可在患者下次使用抗菌药物之前采集。同时为减少抗菌药物的影响我们会采用带有抗生素吸附功能的血培养瓶。
血培养的采集数量
对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者,推荐同时采集2~3套,即双瓶双臂同时采集血培养标本。
采血量
对于败血症的检测非常重要。对于成人,采血量在2-30 ml时致病菌的检测与血量成正比,虽然采血量增长至40 ml(甚至更高)时血培养阳性率仍在提高,但已经不再与采血量成正比。对于婴幼儿,采血量不应超过患儿总血量的1%。
血标本在需氧瓶和厌氧瓶间的分配
在常规血培养中,推荐成对使用需氧瓶和厌氧瓶。如果采血量低于推荐血量,应将血标本先注入需氧瓶,再将剩余血液注入厌氧瓶
采集部位:推荐从外周静脉采集血液标本
导管相关血流感染(CR-BSI):
1、希望保留深静脉导管者
至少2套血培养,其中至少一套来自外周静脉,另一套从导管采集,两个来源的采血时间必须接近(建议≤5分钟),并各自做好标记。
2、决定拔除深静脉导管者
从独立的2个外周静脉部位,无菌采集2套血培养,同时无菌下取出导管并剪下5cm导管末梢送实验室(实验室采用Maki 半定量平板滚动培养)。
3、在采血2-5天内,无需重复做血培养,细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症除外。 多次采血应在不同部位的血管穿刺以排除皮肤菌丛污染的可能。除非无法作静脉穿刺取血,否则不应从留置导管内取血。
4、如血培养是通过静脉植入管采集的,不用弃去起始部分的血液,应同时自外周静脉采集血液进行血培养,以协助判读血培养阳性结果。
无论使用什么方法采集血培养,应尽量减低血培养的污染率至≤3%。
范文五:血培养标本采集
血培养标本采集
学习内容
?1、本次学习的目的
2、血培养污染的主要原因?
?
?
?3、血培养标本采集4、血培养标本采集注意事项
一、学习的目的
标本采集、运送的方法,以保证标本检测的准确性,提高阳性率,指导临床正确合理用药,提高治疗效果。使临床医务人员正确掌握血培养
将新鲜离体的血液标本接种于营养培养基上,在一定温度、湿度等条件下,使对营养要求较高的细菌生长繁殖并对其进行鉴别,从而确定病原菌的一种人工培养法。
二、血培
养污染?
?皮肤消毒不彻底—皮肤表面菌丛污染?采血操作的技术不当—操作中污染
二、血培
养污染?
?皮肤消毒不彻底—皮肤表面菌丛污染?采血操作的技术不当—操作中污染
采集
步骤
手消毒
洗手
有效期培养液
清澈
破裂检查培养瓶
无渗漏
皮肤消毒
血标本采集的量
?对于成人,每瓶血培养需要5-10ml血液。?对于儿童,每瓶需要2-4ml血液。
?对于婴幼儿,采血量不应超过患儿总血量的1%。
置于防漏、防渗、相
已采集的标本应视为潜在性生物危险品,对密封的容器中收集、立即送检,一般不得超过2小时室温,切勿放入冰箱内冷藏或冷冻
注意事项
?在使用抗菌药物之前采集标本,应注明标本采集时间,精确到小时
?标本采集过程中必须严格无菌操作,以免将污染菌误以为病原菌
?要保证足够的标本量,以提高血液培养阳性
?根据患者的具体情况,采用不同的培养瓶,危重患者可同时采用多种培养瓶,以免漏检,必要时增加送检次数
讨论
存在问题
1、血培养的阳性率不高
2、血培养标本污染
3、血培养采血消毒不规范
4、未在合适的时间采集血培养标本
5、血培养标本送检不及时
血培养阳性率的影响因素
?临床和实验室因素
?采血量
?抗生素使用
?血培养数目
?血培养时机
?培养时间
?培养环境
?培养基
结果——假阴性
采血量不够
血液凝固
输液处采血
大剂量使用激素后
提高血培养阳性率的因素
?皮肤的充分消毒
?避免留取一套血培养:24H内应在不同静脉穿刺部位留取2或3套血培养(包括需氧和厌氧瓶)?每个培养瓶应留取至少10ml血液标本
?如从静脉导管录取血液标本,应同时经外周静脉留取,以帮助鉴别污染菌及真正致病菌
?应根据临床情况及微生物实验室的建议使用适当的培养基和收集系统
?如有可能,应在使用抗生素前留取血标本
血培养:皮肤消毒减少污染
?没有明确证据提示应使用何种消毒剂能减少假阳性结果
?使用皮肤消毒包装及含有乙醇的消毒剂可能有帮助
采集血培养的方法:血培养次数
?第二套或第三套血培养能够:增加致病菌检出率有助于识别污染
采集血培养的方法:更换针头
?不推荐将血标本注入血培养瓶前更换针头:
?1)增加针刺伤的危险
?2)轻度降低细菌污染的危险性
采集血培养的方法:采血量
?成人菌血症时血液中细菌浓度<103cfu/ml
?推荐留取20-30ml血液
?血培养每增加1ml,培养检出率增加3%
血培养瓶的接种顺序
?如果用注射器及针采血,应先接种厌氧瓶避免空气进入。?如果抽取的血液量少于推荐量,血液应先足量接种需氧瓶,剩余的血液应该接种到厌氧瓶中。
?如果用采血针采血,应先接种需氧瓶,以免装置里的空气传送到厌氧瓶中。
血培养:标本运送与处理时间?血培养运送时间不超过2小时?实际平均运送时间为10.4小时
外周血培养采集规范
?通过新的外周静脉留取血标本
?对血培养瓶进行消毒
?消毒静脉穿刺部位需严格规范
?消毒后不要再次触摸穿刺部位
?血培养是诊断血行性感染的唯一手段
?规范留取血培养是提高阳性率的重要途径
优质的标本采集的要点
?每一对瓶血培养应该从身体的不同部位采取?用来培养的血应该是静脉血而不是动脉血
?根据推荐,应该避免从静脉或动脉导管抽血,因为通常这些装置污染率较高
?采集标本前的皮肤消毒非常重要
?尽可能快地(最好在2小时内)将标本送到临床微生物实验室,进行培养。如果有任何耽搁,应暂时在室温下保存
?★检查瓶子上的标签与申请单是否相符;所有的血培养瓶上都应标明患者的情况(包括日期,时间,采样位置);并在申请单上注明采血量,抗生素使用情况以及采血部位(如静脉、导管)
THANKS
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