范文一:免疫组化染色的注意事项
免疫组化染色方法已不是什么很难的问题,操作步骤简单也易掌握,但要染好免疫组化,其中方法的技巧将是每位操作者在实际工作中不断摸索和探讨的事,但最基本的应从以下方面加以注意:
(1)去除内源酶及内源性生物素
一般我们进行免疫组化标记的都是一些生物体组织,其中自身含有一定量的内源酶和内源性生物素,而免疫组化各种染色大部分是用过氧化物酶来标记抗体的,酶的作用是催化底物,使显色剂显色,而组织中的内源性酶同样也能催化底物,使其显色,这就影响免疫组化的特异性,所以在标记抗体的过氧化酶进人组织切片之前就应设法将组织内的内源性各种酶灭活,以保证免疫组化染色在特异性情况下进行。
1) 去除内源酶
常用的去除内源性酶的方法是3%过氧化氢水溶液。但在含有丰富血细胞的标本中,由于其中含有大量的具有活性的过氧化物酶,能与过氧化氢反应,出现气泡现象,易对组织结构和细胞形态产生一些不良影响,但用3%过氧化氢的方法,能够去除大部分内源性酶,即使有些血细胞在显色后也出现棕黄色反应,但由于其形态结构与组织细胞不同,也易鉴别,而且此方法比较通用易操作,但应注意过氧化氢的浓度不能过高,一般为3%一5%,时间不宜过长,最好室温10min。
2) 去除内源性生物素
在正常组织细胞中也含有生物素,特别是肝、脾、肾、脑,皮肤等组织中,在应用亲和素试剂的染色中,内源性生物素易结合卵白素,形成卵白素一生物素复合物,导致假阳性,所以在采用生物素方法染色前也可以将组织切片进行0.01%卵白素溶液室温处理20min,使其结合位点饱和,以消除内源性生物素的活性。
3) 灭活碱性磷酸酶
最常用的方法是将左旋咪挫(以每毫升加24mg)加入底物液中并保持pH值为7.6~8.2,能除去大部分内源性碱性磷酸酶,对于仍能干扰染色的酸性磷酸酶可用0.05mo1/L酒石酸抑制。
(2)抑制非特异性背景着色
非特异性着色最常见的情况是抗体吸附到组织切片中高度荷电的胶原和结缔组织成分上,而出现背景着色,为了防止这种现象,最好用特异性抗体来源的同种动物灭活的非免疫血清在特异性抗体之前进行处理,以封闭荷电点,不让一抗与之结合,但这种方法一般实验室很难实现,一般常见实用的血清是2%~10%羊血清或2%牛血清白蛋白在室温下作用10~30min即可,但应注意此种结合是不牢固结合,所以最好不要冲洗,倾去余液直接加一抗,对于多克隆抗体来讲,易产生背景着色,在稀释特异性抗体时可采用含1%非免疫血清的pH7.4的PBS液。
(3)缓冲液
免疫组化染色标记是对生物体组织抗原进行标记,抗原抗体最适合的pH值为7.2~7.6,最常用的是0.0l mol / LpH7.4磷酸缓冲液(PBS)。简易配法:5000ml蒸馏水中分别加入l g NaH2PO4、15.6gNa2HPO4 、42.5gNaCl。但如果是
采用碱性磷酸酶(AP)作为标记物底物的方法时可以用0.02mol/L TBS pH8.2缓冲液比较好。
(4)抗原修复
经甲醛固定的部分组织细胞,可使免疫组化标记敏感性明显降低,这是因为甲醛固定过程中形成醛键或保存的甲醛会形成羧甲基而封闭部分抗原决定簇。因此,在染色时,有些抗原需先进行修复或暴露。
抗原修复方法可分为化学方法和物理方法。化学方法是以酶消化方法,常用胰蛋白酶及胃蛋白酶,配制浓度与消化时间要适度。常用的物理方法有单纯加热、微波处理和高压加热。在选用这三种加热法时,浸泡切片的缓冲液的离子强度和PH值、加热的温度和时间均影响着抗原修复效果。目前最常用的修复方法有如下凡种:
1)胰蛋白酶(Trpsin)
主要用于细胞内抗原的修复。一般使用浓度为0.1%,37℃作用10min。 配法:0.1g胰蛋白酶加入到0.1%pH7.8CaCl2(无水)水溶液中溶解后即可。
2)胃蛋白酶(Pepsin)
主要用于细胞间质或基底膜抗原的修复。一般浓度为0.4%,37℃作用30min。
配法:0.4g胃蛋白酶溶于0.lmol/L HCl水溶液中。
3)热引导的抗原决定簇修复(Heat Induced Epitope Retrieval,HIER) HIER对大多数的抗体有益,尤其是对核抗原的修复作用更加明显,最常用的抗原修复液是pH6.0的枸橼酸缓冲液和pH8.0的EDTA缓冲液,它们的作用原理是通过钠离子的螯合而实现的。抗原修复液的pH值非常重要,有效的抗原修复pH值要比修复液的化学成分更重要,同样的修复液随着pH值的升高染色的强度逐渐增强,但最佳pH值范围为6.0~10.0,对于大多数抗原这个范围的pH值都能进行有效的修复,有些抗体(如Ki-67、ER)则在pH值l.0~3.0和6.0~8.0更为有效。作为通用修复液碱性pH值的修复液要比酸性的有效,而对固定很长时间旧的存档组织,酸性pH值的修复液则优于碱性的修复液,所以两种抗原修复液可作为相互替补的进行抗原修复。在进行HIER过程中应防止切片的干燥,加热时必须达到规定的温度,保温时间要足够,对于一些不要抗原修复的抗体最好不要采用HIER处理,否则对染色无益,但有些抗体则需要利用多种修复联合应用。
范文二:HE染色注意事项
HE 染色注意事项:
1. 染色时PH 值的调节是很重要的,有时组织块在多聚甲醛中固定时间过长往往使组织酸化而影响细胞核的着色,因此切片入水后,转入饱和碳酸锂水溶液中处理10-30分钟,这样可使细胞核着色较好。
2. 用伊红染色切片时,往往在经脱水的低浓度酒精时极易脱色,特别是对于细胞密集的组织更明显,这时可在脱水至95%酒精1后,再以95%配制的1%伊红液中复染3-5分钟,然后脱水透明,可以获得满意的效果。
3. 苏木精染色后,分色是至关重要的,应该在显微镜下进行。一般以细胞核染色比较清晰,细胞质等基本无色为宜。如发现过染,可以延长分色时间,若染色太浅,则应重新进行染色后再分色,总之必需分色至细胞核清晰而背景基本无色才能往下进行。
4. 切片经酒精脱水后,如在转入二甲苯时有混浊现象产生或呈白色不透明状态,此为脱水不彻底,应立即将切片退回无水酒精重新脱水,如再不透明时则应更换无水酒精。
HE 染色是一种十分常见的染色方法,但对于不同的组织,其脱水,染色,透明等步骤的具体时间有所不同,很多环节还有待操作者进一步摸索
上面的链接中,苏木素的配方属于Harris 苏木素,特点是即配即用。
如果你要长期使用,建议采用Mayer 苏木素, Delafield 苏木素或Ehrlich 苏木素的配方(上网检索吧,资料很多)。这些苏木素都可以存放2年以上;尤其是后两者(我们实验室翻出来一些1978年配制的这种苏木素,过滤后染色效果与新液没有什么差别。)
值得注意的是:
1. 苏木素中的矾类,太少会使核染偏红,太多又会造成染色弥散,需要严格按照前人的配方摸索。
2. 刚配好的苏木素或者存放数年以上的,都应当过滤,否则分色效果不好。
3. 建议在分色-水洗后,入碳酸锂的水溶液(很稀到饱和都可以),恢复苏木素的蓝色。一般需要5-10分钟。劝你不要用氨水(有的书上这么讲的),因为氨水在有的情况下会造成脱片。
4. 如果伊红染色效果不好(颜色太淡),那么可以按照每100ml 然液加一滴冰醋酸的办法增强胞浆着色。但负面作用是,如果染料质量不佳,有可能在切片存放1-2年后退色。所以你可以根据需要灵活选择。
HE 染色配方及步骤:
1、1g 苏木精倒入小烧杯—10ml 乙醇
大烧杯加20g 硫酸铝钾---200ml 水加热溶解
将上述二者混合,烧开后,立即将其放入冷水中,同时倒入0.5g 黄色氧化汞-----冷却后过滤即可
5分钟
2、分色液:70%酒精 90ml+ 冰醋酸10ml (数分钟,至颜色适当即可)
3、95%酒精99ml+伊红1g (片刻)
4、95%酒精 2缸 每次30秒内
5、100%酒精2-3缸每次30秒内
6、100%二甲苯3缸 第一缸10分钟,第二、三缸各五分钟
7、封片
冰冻切片和石蜡包埋做切片有哪些不同点(操作,用途,优缺点)?这个问题有点复杂,试着回答:
包埋介质不同,使用的仪器和步骤不一样,当然操作也不同,但用途基本上大同小异,区别在于石蜡切片薄,组织结构清楚,可以保存组织包埋块,但有些抗体能够用冰冻切片,不能用石蜡切片,或者是冰冻切片效果更好,冰冻切片需要的时间短一点。具体使用何种切片,要据情况而定。
范文三:细菌的鞭毛染色及其注意事项
(一)目的:学习细菌的鞭毛染色法
(二)原理:细菌的鞭毛极细,直径一般为10—20nm,只有用电子显微镜才能观察到。但是,如采用特
殊的染色法,则在普通光学显微镜下也能看到它。鞭毛染色方法很多,但其基本原理相同,即在染色前先
用媒染剂处理,让它沉积在鞭毛上,使鞭毛直径加粗,然后再进行染色。常用的媒染剂由丹宁酸和氯化高
铁或钾明矾等配制而成。现推荐以下两种染色法。
(三)器材
1.活材料:培养12-16h的水稻黄单胞菌(Xanthomonas oryzae),粘质赛氏杆菌(Serratia marcescens)或假单细胞菌(Pseudomonas sp.)斜面菌种。
2.染色液和试剂:硝酸银染色液(见附二、(一)、8)、Leifson染色液(见附二、(一—)、9)、香柏油、二甲苯。
3.器材:载玻片、擦镜纸、吸水纸、记号笔、玻片搁架、镊子、接种环,显微镜。 (四)方法
1.镀银法染色
(1)清洗玻片 选择光滑无裂痕的玻片,最好选用新的。为了避免玻片相互重叠,应将玻片插在专用金属
架上,然后将玻片置洗衣粉过滤液中(洗衣粉煮沸后用滤纸过滤,以除去粗颗粒),煮沸20min。取出稍冷后用自来水冲洗、晾干,再放入浓洗液中浸泡5—6天,使用前取出玻片,用自来水冲去残酸,再用蒸馏
水洗。将水沥干后,放入95%乙醇中脱水。
(2)菌液的制备及制片:菌龄较老的细菌容易失落鞭毛,所以在染色前应将待染细菌在新配制的牛肉膏蛋
白胨培养基斜面上(培养基表面湿润,斜面基部含有冷凝水)连续移接3-5代,以增强细菌的运动力。最
后一代菌种放恒温箱中培养12—16h。然后,用接种环挑取斜面与冷凝水交接处的菌液数环,移至盛有1—2mL无菌水的试管中,使菌液呈轻度混浊。将该试管放在37?恒温箱中静置10min(放置时间不宜太长,否则鞭毛会脱落),让幼龄菌的鞭毛松展开。然后,吸取少量菌液滴在洁净玻片的一端,立即将玻片倾斜,
使菌液缓慢地流向另一端,用吸水纸吸去多余的菌液。涂片放空气中自然干燥。 用于鞭毛染色的菌体也可用半固体培养基培养。方法是将0.3-0.4%的琼脂肉膏培养基熔化后倒入无菌平皿
中,待凝固后在平板中央点接活化了3-4代的细菌,恒温培养12-16h后,取扩散菌落的边缘制作涂片。 (3)染色
?滴加A液,染4—6min。
?用蒸馏水充分洗净A液。
?用B液冲去残水,再加B液于玻片上,在酒精灯火焰上加热至冒气,约维持0.5—1min(加热时应随时补充蒸发掉的染料,不可使玻片出现干涸区)。
?用蒸馏水洗,自然干燥。
(4)镜检:先低倍,再高倍,最后用油镜检查。
结果:菌体呈深褐色,鞭毛呈浅褐色。
2.改良Leifson染色法
(1)清洗玻片法同1。
(2)配制染料 见附录二(一)9。染料配好后要过滤15-20次后染色效果才好。 (3)菌液的制备及涂片
?菌液的制备同1。
?用记号笔在洁净的玻片上划分3—4个相等的区域。
?放1滴菌液于第一个小区的一端,将玻片倾斜,让菌液流向另一端,并用滤纸吸去多余的菌液。
?干燥 在空气中自然干燥。
(4)染色
?加染色液于第一区,使染料覆盖涂片。隔数分钟后再将染料加入第二区,依此类推(相隔时间可自行决
定),其目的是确定最合适的染色时间,而且节约材料。
?水洗:在没有倾去染料的情况下,就用蒸馏水轻轻地冲去染料,否则会增加背景的沉淀。 ?干燥:自然干燥。
(5)镜检 先低倍观察,再高倍观察,最后再用油镜观察,观察时要多找一些视野,不要企图在1-2个视
野中就能看到细菌的鞭毛。
结果:菌体和鞭毛均染成红色。
(五)注意事项
1.镀银法染色比较容易掌握,但染色液必须每次现配现用,不能存放,比较麻烦。 2.Leifson染色法受菌种、菌龄和室温等因素的影响,且染色液须经15-20次过滤,要掌握好染色条件必须经过一些摸索。
3.细菌鞭毛极细,很易脱落,在整个操作过程中,必须仔细小心,以防鞭毛脱落。
4.染色用玻片干净无油污是鞭毛染色成功的先决条件。
范文四:免疫组化染色的操作技巧和注意事项
China Continuing Medical Education, Vol. 7, No.1848
参考文献
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疗,2011,30(3) :130. 的应用 [J]. 国际护理学杂志,2014,14(5) :1247-1248. [2] 吴艳春,冉玉力,廖雪娇 . 持续质量改进对血液透析半永久留 [4] 张云,熊道海 . 血液透析室医院感染管理持续质量改进的
置导管患者营养状态及长期并发症的护理研究 [J]. 中国保健营养 方 法 与 评 价 [J]. 中 国 社 区 医 师 ( 医 学 专 业 ),2013,15(5) :
373-374. ( 上旬刊 ),2014,10(4) :2033-2034.
免疫组化染色的操作技巧和注意事项
鞠学萍 一种蛋白质,通过稀释抗体可以实现该蛋白质疏水性的变化,如 [1]【摘要】目的 对免疫组化染色的操作以及注意事项进行探讨,分析存 。 果 PH 和抗体等电点接近,疏水性会非常大 在的问题,提供解决对策。 方法 2010~2011 年我院共有 200 例患者 1.2 抗原和抗体的反应会引起免疫系统的免疫应答反应,产生特 异接受免疫组化染色,共有 60 例问题标本,我们对这些问题标本进行 性物质,抗体是在刺激源的影响下,浆细胞产生的特异性蛋白质, 如了研究分析,采取科学的处理方式应对。结果 通过对这些问题样本
进行了研究分析,针对操作过程中的组织准备、蜡块选择与切片质量、 果组织内有其他的相同抗原就会和抗体产生反应,多克隆抗体 具有抗原修复以及染色等提出了应对措施和科学建议。结论 免疫组化染 很强适应性,在使用的时候应该比较注意,避免其发生交叉 反应。 色的每一个步骤和细节都会对染色的结果产生影响,所以应该要对 1.3 抗原决定簇被封闭后会引起抗原间的相交,需要有效的进行 染色的问题引起重视,提升染色的质量。 【关键词】免疫组化 ;技术方法 ;质量控制 ;抗原修复 抗原修复。酶消化以及热修复是使用比较多的方式,除此外,微 【中图分类号】R446.6 【文献标识码】B 波和高压高温也是经常用到的方式。 【文章编号】1674-9308:2015:18-0048-02
1.4 实验结果会因为组织固定不恰当而受到影响,结果的好坏和 抗doi :10.3969/j.issn.1674-9308.2015.18.030 Operating Skills and Precautions of Immunohistochemical Staining [2]原保持之间的联系非常紧密 ;固定不当的话,组织会出现自溶、 变JU Xueping, Fourth Hospital of Daqing City, Daqing 163316, China 干硬、形变,如果自溶,抗原必然会丢失,干硬则是变性的表现, 都[Abstract] Objective To investigate the operations and precautions of 会造成抗原功能的改变,导致染色后脱色以及颜色不正确,因 此体immunohistochemical staining. Analysis of existing problems and provide Solutions. Methods 200 patients underwent immunohistochemical staining 积要求非常严格。 from 2010 to 2011 in our hospital, a total of 60 cases of the problem 2 IHC 过程及注意事项 specimens,We have studied these issues specimens, taking a scientific 2.1 组织准备免疫组化要求 先将组织处理妥当,组织保存良好,approach to deal with. Results The analysis of these issues in our hospital
samples. During the operation of the organization for the preparation, 组织和细胞的形态结构, selection and slice quality wax block, antigen retrieval and staining 抗原免疫活性值都能够确保正常,那么组织和固定进行处理的时 proposed countermeasures and scientific advice. Conclusion Every step and
detail of Immunohistochemical staining will have an impact on the results 候就要求比较严格,能够即时、必要处理。 of staining, So the stained problem should be attention, improve the quality 2.2 蜡块选择与切片质量 对于脱水和包埋质量好的蜡块在选择上,of staining. 能够充分的保证蜡 [Key words] Immunohistochemistry, Technical methods, Quality control, Antigen retrieval
膜的完整、均匀程度。通常切片的厚度要确保在 3 μm 之内,对
于出现过厚的切片会导致与载玻片的粘附性不牢固,对于乳腺组
免疫组化:IHC:技术是上世纪 80 年代开始在我国使用,目 织是人体中脂肪含量最多的部位之一,在高温和高压的修复处理 前也有几十年的发展历史,是病理科室非常重要的一项应用技术。 [3]。 作用时,容易产生脱片现象 综合性操作会让反应步骤增加,受到的影响因素也会增加,同时 2.3 进行抗原修复的时候,因为多聚赖氨酸分子以及组织切片的 要求技术员能够有比较扎实的操作技术,在临床个体化治疗应用 结合力存在,会给修复带来障碍,所以需要对其结合力进行减弱, 中非常重要。免疫组化技术的问题也是比较突出,本文就 200 例 才能够避免脱片。对修复液的选择也是非常重要的,温和的药物 免疫组化染色标本进行了探讨,对其中的 60 例问题标本进行了分 可以作为首选,常用的有枸橼酸修复液等。 析,给出了应对策略。 2.4 染色中应注意的一些细节,把孵育盒放置在一个比较平稳的 1 免疫组化染色不理想的原因分析及改进措施 地方,不要使抗体液流到组织的另一侧 ,这会使结果呈现假 1.1 大分子化学结构非常稳定,水肿以胶状存在,不容易被破坏, 阴性反应 ;另外抗体孵育盒里面要留有适量的蒸馏水 ,但水 所以体内可以存在很长的时间,对淋巴细胞可以产生持续的刺激。 不宜过多 ,防止因水蒸汽在盒盖聚成水滴 ,掉落在切片上 , 抗体是人体重要防御机制,在受到抗原的刺激就会由浆细胞分泌 造成抗体稀释 ;再有就是保持切片在整个染色过程中 ,一定 要保持湿润 ,不要出现干片的现象。最后在加入抗体的时候, 要把组织上的水弄干 ,避免抗体稀释影响检测结果 。对于免 作者单位 :163316 黑龙江省大庆市第四医院
中国继续医学教育 第7卷 第18期 49
疫组化染 色过程 , 提出 了主要的应对措 施以及科学合理 的建 现在的科学技术发展快速,临床中对于医护人员的能力要求也是 议。 越来越高,对各项标准和规范认真的执行,才可以促进免疫组化 3 讨论 的发展,让患者的临床治疗获得可靠的帮助。本文对免疫组化染
色的操作技巧和注意事项进行了简单的探讨分析,根据笔者的经 免疫组化技术目前已成为病理科工作的重要组成部分,免
验进行了一些阐述,给出了一些建议,希望能够给免疫组化的应 疫组化对于疑难病例的诊断起到了决定性作用,尤其是对肿瘤
用提供一些参考信息。 的治疗方法以及药物的选择具有指导意义。大型医院均已采用
自动化免疫组化染色仪,而大部分中小型医院仍然依靠人工操 作。 参考文献 人体抗体和抗原的结合存在非常高的特异性,免疫组织化学
也是使用这样的原理,将组织以及细胞的化学物质提取后,当成 [1] 李德本,王涛,姜骏 . 免疫组化染色的操作技巧和注意事项 [J].
临床与实验病理学杂志,2011,27(11) :1260-1261. 抗原来进行动物抗体刺激,用刺激后组织和细胞产生的抗体来进 [2] 周会芹,杨江辉,余摇琦,等 . 不同组织固定液对免疫组化结果 行检测组织以及细胞同类抗原。免疫组化技术的过程和环节比较 的影响 [J]. 诊断病理学杂志,2009,16:6::478. 多,内容也比较复杂,在关键的地方符合标准后获得的检验结果 [3] 许摇力,吴摇珊,杨清海,等 . 免疫组化技术:七:[J]. 诊断病
理学杂志,2010,17:2::160. 才能够有效可靠,因此看似单一的技术,其实不是非常容易掌握的。
对比肌酐水平和GFR(肾小球滤过率)水平对心功能衰竭预后的意义
刘欣 于闯 张长军 可使肾小球滤过率下降,表现出肾功能下降;而肾功能下降又可 【摘要】目的 探讨检测肌酐及 GFR 水平对预测心功能衰竭预后的价 激活肾素血管紧张素醛固酮系统,加剧心功能衰竭,形成恶性循 值。方法 纳入心功能衰竭患者 100 例,持续随访 3 个月,按是否生 [1]。由此可推测检测肾功能可能有助于预测心功能衰竭患者预 环 存分组,对比两组血肌酐水平及 GFR 水平,同时行 Cox 回归分析,
明确以上指标对患者预后的影响。结果 生存组血肌酐明显低于对照 后,本研究则以肌酐和 GFR 为例,验证上述论点,报告如下。 组,肾小球滤过率高于对照组,上述差异均有统计学意义:P , 0.05:。 1 资料与方法 Cox 回归显示血肌酐和 GFR 均是心力衰竭患者死亡的危险因素:P
1.1 纳入标准 , 0.05:。结论 肌酐水平越高、GFR 越低,心功能衰竭患者病死率越高。
【关键词】肌酐 ;肾小球滤过率 ;心功能衰竭 ;肾功能不全 具备器质性心脏病史,胸部 X 片结合临床症状及体征确诊为 【中图分类号】R446.1 【文献标识码】B 心功能衰竭;左室射血分数:LVEF:, 50%;纽约心脏病学会 【文章编号】1674-9308:2015:18-0049-02
:NYHA:心功能分级 IV 级;随访期间未脱离;入院时间 2013 年 doi :10.3969/j.issn.1674-9308.2015.18.031 Significance of Comparison of Creatinine and GFR Level on the 1 月, 2014 年 12 月。排除严重基础疾病,如肺病、肾病史等;排 Prognosis of Heart Failure 除恶性肿瘤患者;排除合并其他可能影响肾功能疾病者。 LIU Xin YU Chuang ZHANG Changjun, ICU, Beijing Changping Hospital of TCM, Beijing 102200, China 1.2 一般资料
[Abstract] Objective To investigate the value of detection of serum 纳入符合上述要求患者共 100 例,男女比例 58:42,年龄 creatinine and GFR levels in predicting the prognosis of heart failure. 45 , 81 岁,平均:63.1?12.5:岁,心功能衰竭病程 1 , 11 年, Methods 100 patients with heart failure patients were enrolled, continuous
follow-up of 3 months, according to whether the survival group, contrast 平均:6.1?4.8:年。 two groups of level of serum creatinine and GFR. At the same time, Cox 1.3 方法 regression analysis, clear above indexes on the prognosis of patients with 所有患者入选第二日采集清晨空腹静脉血 4 ml,应用全自动 influence. Results The survival group, serum creatinine was significantly
lower than that of the control group, glomerular filtration rate was 生化检测仪:AU5800,美国贝克曼库尔特:检测血肌酐水平,同 significantly higher than that of the control group, the differences were 时参考肾病预后膳食改良实验:MDRD:方程计算 caGFR,以代 -statistically significant (P<0.05). cox="" regression="" analysis="" showed="" that="" serum="" 替="" gfr="" 值;统计两组患者左室射血分数、入院时血压等一般临床="" creatinine="" and="" gfr="" were="" risk="" factors="" of="" death="" in="" patients="" with="" heart="" failure="">0.05).>
(P<0.05). conclusion="" the="" serum="" creatinine="" level="" is="" higher,="" the="" lower="" the="" 病例信息。所有患者持续随访="" 3="" 个月,按随访结果划分为死亡组="" gfr,="" heart="" function="" failure="" patients="" mortality="" rate="" is="" high.="" 和存活组,对比两组肌酐及="" gfr="" 水平等。="" [key="" words]="" creatinine,="" glomerular="" filtration="" rate,="" heart="" failure,="" renal="" insufficiency="" 1.4="" 统计学方法="" -应用="" spss="" 19.0="" 处理数据,计量资料按:x?s="" :表示,组间行="">0.05).>
t 检验,影响生存时间的多因素分析行 Cox 回归分析。
2 结果 慢性心功能衰竭不仅直接表现出心脏泵功能衰退,还可直接
2.1 两组肌酐、GFR 水平及部分临床信息对比 影响其他重要脏器功能,如心输出量不足导致肾血流下降,进而
死亡组共 31 例,存活组共 69 例,两组肌酐及 GFR 水平有明 显差异,见表 1。表中同时给出其他部分指标对比结果。 作者单位 :102200 北京市昌平区中医医院重症医学科
范文五:纺织助剂在染色过程中的注意事项
纺织助剂在染色过程中的注意事项 涂料印花增稠剂 http://www.weikailai.com/products/03/
1、首先染料由 辅料缸搅拌溶化并且线性计量打入,同时盐硷加入按照预先设定程序线性加入,如加盐第一次上染时,一次性或分几次性加入不仅大大加快上染速度使染色不均匀, 同时引起染料聚积甚至沉淀。加硷之后第二次上染由染浴中pH值控制上染速度和固色程度,大量硷剂的加入pH值会迅速升高,不但水解染料增多,而且大量染料 固着,很难移染,造成匀染性、透染性不好,故合理程控盐硷的用量及加入方式,从而影响上染(吸附)阶段和固色(反应) 阶段,以确保最佳的染色效果,防止染花、透染和色差等。
2、色纱在进行皂煮时应采用具有高效润湿及净洗功能的洗涤剂RSK 作皂洗液。此阶段包括水洗温度、水流速度、pH值等方面,主要是去除电解质和未反应的染料,因此需采用高温(90?-95?) 、水流速度快和较强净洗功能的洗涤剂。
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