老衲的鼻毛可是开过光的
范文一：检验科标本采集要求
检验科各种检查标本留取要求 检 测 项 目 标本留取方法 备 注 生化全项、临床生化常规、肾功能、1. 临床生化常规、心肌酶
血糖、离子类、血脂、肝功能、心肌谱、淀粉酶、血糖、胆碱酯酶、血早晨空腹，静脉血3-5ml，干燥管。
酶谱、淀粉酶、糖化血清蛋白、胆碱酮体等急查项目可随时留取标本。 生
酯酶、血酮体、蛋白电泳、肝纤维化2. 溶血标本、重度脂浊标本
标志物、免疫球蛋白、补体、C-反应不能使用。 蛋白。 化
3. 重度黄疸标本不宜用于
血糖、血磷、CK-MB及血脂等项目
检测。 检
无机离子、尿素、肌酐、尿酸、 24小时尿，麝香草酚防腐（每
1000ml尿液?1克）。 验 尿淀粉酶等。 尿淀粉酶急查可留随机尿，防止唾
生液溅入。
化
尿糖、尿蛋白 24小时尿，甲苯（或二甲苯）防腐
（每1000ml尿液加5ml）。
血气分析 注射器内不能有气体，抽好血后用肝素抗凝，动脉血2ml。
小橡皮封住针头，将注射器在手中
来回搓动，立即送检。 HBsAg、甲肝抗体、丙肝抗体、戊
肝抗体“乙肝两对半”、“乙肝三对”、 “乙肝三对半”、“乙肝四对”、输血前免 溶血标本不宜用于肿瘤标志物的检早晨空腹，静脉血3-5ml，干燥管。 四项、发热全项、抗“O”、RF、肥达测。
氏反应、外斐氏反应、HIV抗体、
疫 AFP、RPR、TPHA、抗精子抗体、
抗ds-DNA、抗核抗体、VCA-IgA、
循环免疫复合物、冷凝集试验、病毒检
五项、结核抗体、多肽系列、CA125、
CA15-3、CA19-9、CYFRA21-1、
验 PSA、NSE、MG7-Ag。
血沉（ESR） 抗凝剂（109mmol/l枸橼酸钠）1. 脂血、溶血标本不宜使
用。 0.4ml加空腹静脉血1.6ml，旋转
混合。（现用一次性血沉管） 2. 血液和抗凝剂比例要准
确。
同型半胱氨酸 EDTA抗凝血2ml（可用一次性血常
规管加静脉血2ml，旋转混合）。 血细胞分析（含白细胞、红细胞、血 红蛋白、血小板、白细胞分类、红细不能有凝块。 一次性血常规管加静脉血0.5ml，
胞比积、红细胞平均容量、红细胞平旋转混合。
均Hb量、红细胞平均Hb浓度等）、
网织红细胞计数、嗜酸性粒细胞计
数、血型。
109mmol/l枸橼酸钠0.3ml+静
脉血2.7ml，旋转混合（现用一次出凝血五项 比例一定要准确，不能有凝块。
性血凝测定管）。
血红蛋白电泳 109mmol/l枸橼酸钠0.1ml+静
脉血0.9ml（或用一次性血凝测定临
管），旋转混合。
同时留取两种标本：1.干燥管静脉 床
血4 ml；2. 抗凝血1 ml（同血红酸溶血试验
蛋白电泳）
检
于试管中加葡萄糖20mg及
109mmol/l枸橼酸钠0.2ml，加入高铁血红蛋白还原试验 标本不能有凝块或溶血。 验
静脉血1.8ml，混匀。
血块收缩时间 干燥管静脉血2ml，记录抽血时间
并立即送检。
红斑性狼疮细胞 干燥管静脉血2-3ml，立即送检。
怀疑是间日疟及三日疟的，应在发一次性血常规管加静脉血0.5ml，
混合。 作后数小时至10余小时采血；怀疑疟原虫
是恶性疟的，应在发作后20小时左
右采血。
微丝蚴 一次性血常规管加静脉血1ml，混晚上让患者躺卧休息，于21-24点
合。 采血。
尿含铁血黄素 新鲜晨尿15ml
病房患者一般留清晨第一次中段尿开始解的一段尿（约3秒）不要，然
约10ml，门诊留取随即尿。 后再用尿瓶接尿约10ml，避免经尿常规
血、白带、粪便混入。 尿乳糜定性 避免经血、白带、粪便混入 一般留清晨第一次尿约20ml。急诊
随时留取。
一小时尿沉渣计数 取3小时混合尿约50ml立即送检3小时尿标本收集时间一般为5：
并记录3小时尿量。 30~8：30：患者先排尿弃去，准
确收集3小时尿液于清洁干燥容器
内。 尿HCG 用洁净尿瓶留尿约5ml。
用竹签或木片取指头大小的新鲜大1. 不要用棉签取大便；
便放入干燥、清洁、无吸水性的有大便常规 2. 不能用吸水纸包大便；
盖容器内，最好用内层涂腊的硬纸
3. 大便标本应取其中脓血、
盒。
粘液等病理成分，若无病理成分，
应多部位取材。
1. 穿刺成功后，按先后抽取1. 标本抽取后立即送检。
二管脑脊液（每管约3ml）于干燥、2. 若遇高蛋白标本则应另加
洁净试管内（试管上注明前后）。 0.5ml标本于一次性血常规管中，脑脊液常规
混合后一起送检，用于细胞计数。 2. 做蛛网膜试验时，再单独
留取2ml标本于干燥试管。 1. 用干燥、洁净容器留取不 少于50ml标本； 标本抽取后立即送检。
2. 另在一次性血常规管中胸腹水常规
加入0.5ml标本，混合后一起送检，
用于细胞计数。
患者起床后刷牙，用3%HO清水 22漱口三次，用力咳出气管深处真正痰涂片找抗酸菌 不要混入唾液及鼻涕。
的痰液，留于清洁、加盖、不吸水
容器内送检。
交叉配血 一次性血常规管加静脉血2ml，混 合。
同时留取两种标本：1.一次性血常 规管加静脉血2ml，混合。2. 干燥标本采集后立即送检。 抗球蛋白试验（Coombs试验）
管静脉血2ml。
唐氏综合征 干燥管静脉血2ml。 怀孕14—17周期间内采血试验。
TB—Ab（结核多种抗原IgG抗体）、 生 无需空腹抽血。 STD（沙眼衣原体、解脲支原体IgG每项检查干燥管静脉血1-2ml。 抗体）、 物
HP（幽门螺旋杆菌抗体） 芯
片 C-12（多种肿瘤标志物） 空腹静脉血2-3ml ，干燥管。 乙肝病毒DNA（HBV-DNA） 空腹静脉血2ml，干燥管。或产妇
乳汁2ml。
丙肝病毒RNA（HCV-RNA） 空腹静脉血2ml，干燥管。
以棉拭子收集宫颈口（女）或尿道淋病奈瑟氏菌（NG-DNA）、
口（男）分泌物或前列腺液放入盛沙眼衣原体（CT-DNA）、
有1ml生理盐水的专用试管里，或荧
解脲支原体（UU-DNA）
初段尿1ml留于洁净尿瓶内。 光
女：取宫颈刮片或阴道分泌物； 人类乳头瘤病毒（HPV-DNA） 定
男：取组织物或分泌物。 量
PC 单纯疱疹病毒（HSV-DNA） 收集患者脑脊液2ml或皮肤、角膜、R
生殖器等处分泌物。
梅毒螺旋体（TP-DNA） 收集患者全血（肝素或EDTA抗凝）
到PCR室取专用样品管。除血液2ml、羊水2ml、病灶渗出物、活
外，其它标本均加于PCR专用样品检组织或分泌物。
管。 1.肺结核取早晨第一口痰液或咽拭
子；2.根据不同部位可取胸腹水
2ml、尿液2ml、脓液、分泌物、
结核分枝杆菌（TB-DNA）
鞘膜积液2ml、脑脊液2ml、粪便
送检。
弓形虫（TOX-DNA） 收集脑脊液2ml、羊水2ml、脑组
织、外分泌物。
人类巨细胞病毒（HCM-DNA） 收集血液2ml、尿液2ml、唾液2ml、
咽拭子支气管洗液、乳汁2ml。
空腹时同时留取3种标本： 1. 肝素瓶在高倍镜室取；
1、 0.2ml肝素+4.8ml静脉血，2. 溶血、脂浊标本对血粘度有
混匀。 影响； 血流变（脑中风预报）
2、 0.2ml枸橼酸钠+1.8 ml静脉3. 抽取标本后应及时混匀；
血，混匀。（同出凝血五项） 4. 抽取标本后在2小时以内送检
3、 血沉管。 或置于4?冰箱内保存。 血小板聚集率 0.2ml枸橼酸钠+1.8 ml静脉血，抽取标本后在2小时以内送检或置
混匀。（同出凝血五项） 于4?冰箱内保存。
手淫采精，要全部射入广口瓶1. 应禁欲3-7天才采精. 2. 天冷
或试管内，记录采精时间，半小时时应将容器先预热（37?左右），精液分析
内送检。 送检过程中要保温。
范文二：检验科标本采集要求
检验科标本采集新要求
一(血常规、糖化血红蛋白:小抗凝子弹头;
二(生化常规(肝肾电脂糖):大红色盖子玻璃试管，不能低于4ml; 三(血流变、糖化血红蛋白:深绿色盖子玻璃试管，5ml; 四(凝血四项:浅蓝色盖子玻璃试管，血标本打至2ml线; 五(血沉:黑色盖子玻璃试管，血标本打至2ml线;
六(微量元素:浅绿色盖子玻璃试管，3ml;
七(甲状腺功能，肿瘤系列，糖类抗原等:塑料试管(或大红色玻璃试管)不能低于3ml。
五 试剂管理制度
1 试剂药品贮存规则
1.1 一般试剂药品
(1)一般试剂药品放置原则:固体与液体分开，氧化剂与还原剂分开，酸与碱要分开放置，易燃易爆药品要远离电源。
(2)试剂放置温度要根据试剂药品所要求，分为常温、4?,8?和4?以下。 (3)在贮存试剂时，要登记试剂的有效期。
1.2 危险性化学药品
(1)危险性化学药品应有专人负责管理，标签必须完整清楚。
(2)酸和碱、氧化剂和还原剂以及其他能相互作用的药品试剂，不应存放在一起，以防变质、失效或燃烧。
(3)挥发性药品应于阴凉避光处保存，严禁日光直接照射。
(4)强氧化剂不宜受热与酸类接触，否则会分解放出活波的氧，导致其他物质燃烧或爆炸。 (5)易爆炸性的药品应放置在有缓冲液体的容器内，以防撞击和剧烈震动而引起爆炸。 2 易腐蚀试剂的使用规定
(1)使用有挥发性强酸、碱以及有毒性的气体时，应在通风橱内开启瓶塞;如无通风橱时，应在空气流通处开瓶;人站在上风向。眼应侧视，操作迅速，用毕立即紧塞瓶塞。 (2)对液体试剂应观察试剂名称、浓度、溶液的颜色、透明度、有无沉淀，以确定试剂是否变质。
(3)取用液体试剂时，应将试剂倒入试管中吸取，原则上不能将吸管直接插入试剂瓶中吸取，用完剩余试剂不能倒回试剂瓶内。
(4)倾倒试剂时，左手握住贴有瓶签的瓶体，右手拨出瓶塞，从瓶签的对侧倒出溶液，避免溶液腐蚀标签，瓶塞开启后将塞座放在桌上，塞心不可与任何物品接触，以免污染试剂，更应注意不可使瓶塞张冠李戴。
3受化学药品伤害的处理
(1)皮肤受强酸或其他酸性药品伤害时，先用大量清水冲洗，再用5%碳酸氢钠冲洗，最后用盐水洗净，并敷以碳酸氢钠溶液纱布条。
(2)皮肤受强碱或其他碱性药物伤害时，先用大量清水冲洗，再用5%硼酸清洗，重者可用2%醋酸湿敷。
(3)溴水伤害皮肤则以多量甘油按摩，使甘油渗入毛孔，再涂以硼酸软膏。 (4)碱性物质溅伤眼睛后，应立即用生理盐水或大量干净水彻底冲洗眼睛至少10min，再用4%硼酸溶液冲洗，后用生理盐水冲洗，并滴以抗菌素眼药，防止感染。 (5)强酸溶液溅伤眼睛，迅速用清水冲洗，然后请眼科医生处理。
4其他管理要求
(1)检验科所用试剂均执行 投标采购的原则;要求试剂质量要合格，有三证;购买试剂时有注意生产日期和失效日期;为了保证试剂的质量，要有计划地进购，不得使用过期试剂。 (2)试剂的存放要严格按照要求执行，以免储存不当造成试剂的失效。 (3)如发现试剂变质和有质量问题，迅速查找原因。为了保证检验结果的准确性，不得使用变质和失效的试剂。
(4)如果更改试剂厂家，应对试剂质量、价格反复论证，写出书面报告后，请示分管院长，才能更换。
(5)对日常所用的抗凝剂和自配的试剂，按作业指导书或操作规程严格操作，保证质量。 (6) 各实验室的试剂要合理使用，妥善保管、每周都要检查所用的每种试剂的库存量，以
便报告主任及时采购。
六实验室消毒技术规范
1使用范围
本规范适用于实验室器材、检验单、废弃标本及相关人员的消毒。检验科的工作场所分为清洁区、半污染区、和污染区。清洁区包括办公室、会议室、休息室、储藏室、培养基室和试剂室;半污染区指卫生通道、更衣室、缓冲间;污染区包括标本收集。存放、处理室，检测室。
2消毒原则
清洁区、半污染区和污染区应分别进行常规清洁、消毒处理、清洁区和污染区的消毒要求、方法和重点有所不同，若清洁区和污染区无明显界限，按污染区处理。 清洁区若无明显污染，应，每天开窗通风换气数次，湿式清洁台面、地面1次;污染区在每天开始工作前及结束工作后，台面、地面应用含有250mg/L的含氯消毒液各擦拭1次。空气选用循环风动态消毒法消毒处理，废弃标本应分类进行消毒处理后排放。半污染区环境消毒同污染区、工作衣、茂每周换洗2次，拖鞋每天用含有溴或有效氯250mg/L的二溴海因或含氯消毒剂浸泡或擦拭1次。所有清洁消毒器材(抹布、拖把、容器)不得与污染区或半污染区共用、工作人员每次下班前应用肥皂流水洗手1min,2min。结核病专业检验室工作人员。每次连续佩戴口罩不得超过4h，工作衣若有明显致病菌污染或从事烈性菌标本检验后，应随时更换，及时进行消毒灭菌。
3检验单的消毒
污染检验单送出前用便携式高强度紫外线消毒器距检验单面不高于3.0cm缓慢移动，照射3s,5s，必须两面照射;也可用经卫生部批准的专用甲醛消毒熏蒸消毒。 4空气的消毒
对污染区内明显产生传染性气溶胶的操作(搅拌、研磨、离心)。特别是可通过呼吸道传播又含有高度传染性微生物(炭疽杆菌、分歧杆菌、球孢子菌、组织胞浆菌、军团菌、流行性感冒病毒等)的操作，应在生物安全柜(负压)内进行，使空气经细菌滤器或热力杀菌通道排除室外。柜内形成负压。要求严格无菌的操作如倾倒培养基。菌种转种和细胞转瓶等，应在100级洁净间或100级生物安全柜内进行，使空气经出效、中效及高效滤器进入室(柜)内，形成正压，极大限度地减少污染、但应注意及时更换滤器，定时检测滤效。 5器材消毒
除已知无传染性器材外，凡直接接触或间接接触过临床检验标本的器材均视为具有传染性，应进行消毒处理。
5.1金属器材
(1)小的金属器材如接种环，用酒精灯烧灼灭菌。当接种环上有较多污染物时，应先在火格上方，把接种环烤干后在缓慢伸入火焰灼烧，以免发生爆裂或溅泼而污染环境。 (2)较大的金属器材或锐利的刀剪受污染后不宜烧灼灭菌，可用2%碱性/中性戊二醛溶液浸泡2h后，洁净水冲洗、沥干，再用干热或压力蒸灭菌。
5.2玻璃器材
(1)采集标本的器材如玻片、吸管、玻瓶要做到一人一份一用一消毒。污染的吸管、试管、
滴管、离心管、玻片、玻棒、玻瓶、平皿等，应立即浸入含氯1000mg/L的消毒剂中浸泡4h，再清洗干净、烘干;也可以浸入洗涤剂或肥皂液中煮沸15min~30min,反复洗刷，沥干，37?~60?烘干。
(2)接种培养过的琼脂平板应压力蒸汽30min，趁热将琼脂倒弃，再刷洗。 (3)用于生化检验或免疫学检验者，洗刷后浸泡于重络酸钾-浓硫酸清洁液内24h，彻底冲洗，最后用蒸馏水冲洗3遍，沥干，烘干。
(4)用于微生物检验者，吸管一端应塞少量棉花，管或瓶应有塞，再用牛皮纸包好，可用热160?2h灭菌，待冷至40?以下才能开烤箱的门，以免玻璃炸裂;若箱内易燃物品冒烟或发生焦味，应立即切断电源并关闭气孔，切勿开启箱门以免导致燃烧;也可用压力蒸汽121?，102.9kPa(1.05kg/cm2)灭菌15min~30min，吸管应直放，空吸管和空瓶口应超下，且不能密闭，带螺旋帽的管瓶灭菌时应将螺旋帽放松。
6 手的消毒
工作前、工作后或检验同类标本再检验另一类标本前，均须用肥皂水洗手2min~3min，搓手使泡沫布满手掌手背及指间至少10s，再用流水冲洗;若手上有伤口，应戴手套接触标本。水龙头应用非手触式开关;肥皂应保持干燥或用瓶装液体肥皂，每次使用时压出;洗手后采用红外线自动干手机将手吹干或用消毒纸巾、纱布或毛巾擦干，不宜设置公用擦手布。 肝炎或结核专业检验室工作人员应戴手套，当明显受致病菌污染，或从事有强传染性病菌如霍乱、炭疽等检验后，应立即用0.2%过氧乙酸溶液或1000mg/L有效氯或有效溴消毒液浸泡3min，然后用清水冲洗。
7废弃标本及其容器的消毒处理
(1)采集检验标本或接触装有检验标本的容器，特别是装有肝炎和结核的检验标本者，应戴手套，一次性使用的手套用后放手机袋内，集中烧毁;可反复使用者用后放消毒液内集中消毒;无手套可用纸套使皮肤不直接与容器表面接触，用后将纸放入污染带内烧毁。 (2)废弃标本如体液等每100mL加漂白粉5g或二氯异氰尿酸钠2g，搅匀后作用2h~4h倒入厕所或粪池内;痰、脓、血、粪及其他固形标本，焚烧或加2倍量漂白粉溶液或二氯异氰尿酸钠溶液，搅匀后作用2h~4h;若为肝炎或结核病者则作用时间应延长至6h后倒入厕所或化粪池。
(3)盛标本的容器。若为一次性使用纸质容器及其外面包装的废纸，应焚毁;对可再次使用的玻璃、塑料或陶瓷容器，可煮沸15min，可用1000mg/L有效氯的消毒液浸泡2h~6h，消毒液每日更换，消毒后用水洗净或流水刷洗。
8实验室的消毒
实验室的各种表面消毒包括:
(1)桌面的消毒:每天开始工作前用湿巾抹擦1次。地面用湿拖把擦1次，禁止用干抹干扫，抹布和拖把等清洁工具各室专用，不得混用，用后洗净晾干。下班前用250mg/L~500mg/L有效氯消毒液抹擦1次.地面的消毒:用2倍浓度上述消毒液拖擦
(2)各种表面也可用便携式高强度紫外线消毒器近距离表面照射消毒。 (3)若被明显污染，如具传染性的标本或培养物外溢、溅泼或器皿打破、洒落于表面，应立即用消毒液消毒，用1000mg/L~2000mg/L有效氯溶液，或0.2%~0.5 %过氧乙酸溶液洒于污染表面，并使消毒液浸过污染物表面，保持30min~60min,再擦，拖把用后浸于上述消毒液内1h。
(4)若已知被肝炎病毒或结核杆菌污染，应用2000mg/L有效氯溶液或0.5%过氧乙酸溶液擦拭，消毒30min。
七 实验室生物安全管理规定
1实验室安全设备及个体防护
(1)实验室应配备必要的生物安全柜或其他物理遏制装置并正确使用，以二级以上(含二级)生物安全柜为宜。
(2)当必须在生物安全柜外处理微生物时，需采取面部保护措施如眼镜、口罩、面罩或其他防溅装置。
(3)在实验室内工作必须使用专用的防护性外衣或制服。人员到非实验室区域(如休息室、图书馆、门房)时，防护服必须留在实验室。防护服可以在实验室内处理，也可以在洗衣房中洗涤，但不能带回家中。
(4)可能接触潜在传染源、被污染的试验台表面或设备时，需戴手套。当检测工作结束时或手套破损时，应摘除手套。一次性手套不用清洗、不能重复使用。戴手套不能接触“洁净”设施表面(如键盘、电话等)，也不宜到实验室外、脱掉手套后，要洗手。 (5)可能产生致病微生物气溶胶或出现的操作包括离心、剧烈震荡或混匀、开启装有传染源的容器(容器内部的压力可能与气压不一致)均应在生物安全柜或其他物理抑制设备中进行，并使用个体防护设备。若选用真空采血管或带安全罩的离心杯，则离心可在开放实验室内进行，而采血管或离心杯须在生物安全柜中打开或在离心机中静置30min后打开。 2实验室安全制度建设和操作
(1)实验室入口须贴上生物危险标志，注明危险因子。生物安全级别、负责人姓名和电话、进入实验室的特殊要求及离开实验室的程序。
(2)禁止非工作人员进入实验室。参观实验室等特殊情况须经实验室负责人批准后方可进入。
(3)禁止在工作区饮食、吸烟、处理隐形眼镜、化妆及储藏食物。
(4)接触微生物或含有微生物的物品后、脱掉手套后和离开实验室前要洗手。 (5)以移液器吸取液体，禁止口吸。
(6)使用尖锐器具时注意安全操作规程。
(7)按照实验室安全规程操作，降低溅出和气溶胶的产生。
(8)每天至少消毒1次工作台面，活性物质溅出后要随时消毒。
(9)所有培养物、废弃物在运出实验室之前必须进行灭活，如高压灭活。需运出实验室灭活的物品必须放在专用密闭防漏的容器内储存、运输及消毒灭菌。
(10)如有条件，工作人员应接受必要的免疫接种(如卡介苗等)。
(11)必要时收集从事危险性工作人员的基本血清留底，并根据需要定期收集血清样本，应有检测报告，如有问题及时处理。
(12)生物安全程序由实验室负责人专门保管及监督执行，工作人员在进入实验室之前要阅读规范并按照规范要求操作。
(13)工作人员要接受有关的潜在危险知识的培训，掌握预防暴露以及暴露后的处理程序。 (14)实验设备在运出修理或维护前必须进行消毒。
(15)人员暴露于病毒时，及时向实验室负责人汇报并记录。
范文三：检验科标本采集SOP
检验科标本采集 SOP
来源:检验医学专题网 加入日期:2008-09-23
1. 目的:
为保障送检标本质量,使送检标本具有代表性,保证检验结果的可 信度和有效性
2. 适用范围:
标本采集的准备
3. 责任人:
检验科全体工作人员,临床医护人员及患者
4. 程序:标本采集,这是分析前阶段质量保证关键的一步。要重视 下列环节的控制:
4.1采样时间的控制,选择最佳采样时间的原则是:
4.1.1最具“代表性”的时间:原则上晨起空腹时采集标本。其主要原因有: 4.1.1.1尽可能减少昼夜节律带来的影响。 许多血液成分昼夜间变换很大, 如 血钾数值, 在高峰值期比低值期增加 5%~10%, 血红蛋白增加 8%~15%, 促甲状 腺素增加 5%~15%血管紧张素可增加 120%~140%。 为减少昼夜节律带来的影响, 使不同患者间,或同一患者不同时期之间检测结果的可比性,除特殊情况外,一般 早晨空腹时采集标本;
4.1.1.2病人处于平静状态, 减少病人由于运动带来的影响; 并减少饮食的影 响;
4.1.1.3易于与正常参考范围作比较;
4.1.1.4便于组织日常工作。
4.1.2检出阳性最高的时间:如细菌培养应尽可能在抗生素使用前采集标本; 尿常规检查应采集早晨第一次尿; 早孕试验应在孕后 35天后送检, 此时阳性率达高 峰。
4.1.3对诊断最有价值的时间:如急性心肌梗死时, cTnL 或 cTcT 的测定在发 病后 4~6小时采样较好:病毒性感染抗体检查, 在急性期及恢复期, 采取双份血清 检察对诊断意义较大;药物监测应根据药物峰值效应,在药物分布结束后监测(通 常在药物输液结束后 2~4小时进行,而地高辛、毛地黄毒甙在输液后 6~8小时进 行)。
4.2采取具代表性的标本 如大便检查应取脓、血部分:脊髓穿刺、脑脊液 穿刺应防止外伤性血液的进入;留取痰标本应防止唾液的混入,静脉采血时,患者 的姿势(卧位、坐位或立位)及止血带的松紧都可影响某些监测结果,通常规定患 者卧位或是坐位采血,止血带使用后 1分钟内采血,见回血后立即松开,通过这些 措施来保证血标本的质量。
4.3采取最合乎要求的标本 主要控制下列三点:
4.3.1抗凝剂的正确应用:血标本如需抗凝,究竟用何种抗凝剂(EDTA )、草 酸钠、拘橼酸钠、肝素等),根据监测要求而选定。抗凝剂的用量与血标本的比例 必须准确无误;
4.3.2防 溶血、防污染要防止由于容器不洁、化学物质引起的污染;细菌培 养时, 非病原菌的污染。 有时还需防止标本接触空气(如血气分析、厌氧菌培养等) 在生化测定中 溶血、 乳靡及黄疸是影响准确性三个常见的主要因素。 其中尤以溶血 最为常见, 许多物质在红细胞内和血浆中的含量不一样, 某些物质, 如钾 ALT 、 AST 、
LDH 红 细胞内含量比血浆中高出数倍乃至数百倍,一旦溶血,造成血浆(清)中这 些物质测定值的假性增高。而另外一些物质,如钠、氯、钙等,又比血浆中含量低, 一旦 溶血,特别是严重溶血,由于稀释作用而使血浆(清)中测定值降低,此外溶 血还干扰比色测定, 特别影响黄色部分的吸光度。 血红蛋白还可与化学试剂起反应, 干 扰测定结果, 其影响可能使测定结果增高, 也可能使测定结果降低, 甚至出现负 值。
4.3.3防止失性采样:如边输液边抽血做 K 、 Na 、 GLU 等测定。
4.4唯一性标志 不同监测项目应有不同的标志(现用真空采血管,人体上 可做到这点) 要防止张冠李戴, 贴错标签。 标本容器的标签上至少应注明下列内容: 4.4.1送检标本科室及病床号;
4.4.2患者姓名及病例号;
4.4.3送检标本名称;
4.4.4检查项目 ;
4.4.5采集标本时间。
注:该 SOP 变动程
序
如果本操作程序使用者在实际工作中发现其存在问题,则应向医院质量安全 管理委员会
范文四：(检验科)临床输血标本采集要求和流程
晋江市医院晋南分院 输血标本采集要求和流程
输血是临床救治危重病人的手段之一，为了受血者得到安全、有效、准确、无误的治疗，标本的正确采集是最为重要的环节，对临床各科送检的血型血清学检测标本（定血型、配血、备血）有如下要求：
1.医师确定输血后，病房护士应根据《输血申请单》的信息准备标本采集试管，到床边核对病人姓名、性别、床号、住院号并贴上标签。
2.抽静脉血2-4ml血（用EDTAK抗凝），随即在床旁注入贴有正确无误标签的试管内，不准离开床边后再贴标签。未查输血前相关传染病指标检验的，要同时抽一管不抗凝血，填写输血前检查申请单送检验科。
3.由专门人员将受血者血标本与《输血申请单》、《输血记录单》、《领血单》一起送到输血科，在标本接收登记本上登记，双方逐项核对后验收并签字。
注意事项：
1.标本不能溶血，因溶血会掩盖配血不合的异常反应。不许抽取胸,腹腔等处积血作配血标本。严禁从正在输液的输液管内抽取血样。
2.因右旋糖酐对配血有干扰,故应在病员输注前进行采血。 3.配血标本必须是输血前3天之内的，超过3天的标本不能代表当前病人的免疫学状态。特殊情况下（如妊娠、病人血管条件差、采
血困难者）也可例外，适当延长到5天。
4.输血科收到血样应逐项核对，如对血样与病人身份有怀疑，或血样质量不合格，应要求重抽，不允许随意修改错误的标签或错误的《输血申请单》或用不合格血样配血。
5.合格血样如不需配血，应按送检时间分别放入4℃冰箱内位置保存，输血标本至少保存7天。 不合格标本拒收的条件：
血量过少、溶血、非EDTA抗凝的血标本，标签模糊，字迹不清，标本与《输血申请单》信息不符或对患者身份有怀疑等有输血安全隐患的情形。
输 血 标 本 采 集 流 程
范文五：检验科标本采集流程
检验科标本采集流程
患者采血前的准备
1. 一般要求:病人在采血前 24h 内应避免运动和饮酒,不宜改变饮食习惯和睡眠习惯。静脉血标
本采集最好在起床后 1h 内进行。采血时间以上午 7~9时较为适宜。门诊病人提倡静坐 15分钟后再采血。 2. 采血时间:有些血液成份日间生理变化较大,因此应相对固定采血时间,一般以清晨空
腹抽血为宜〈急症项目除外〉 。
3. 患者体位:有些血液成份存在立位与卧位之间的差异,为减少这种影响,取血病人的体
位应相对固定。 一般采用坐位取血, 而且取血前应让病人有 10分钟的时间稳定自己的体位。
4. 剧烈的运动:激动的情绪都会影响到一些血液成份浓度的变化,取血的当晨病人不宜做
剧烈的运动,避免情绪激动,取血前应有 10分钟的休息。
5. 输液的影响:由于边输液边采血影响血液成份的测定!规定输液时应在输液的另一侧手
臂取血。
6. 生活方式的影响:烟、酒、咖啡及高脂、高糖饮食,可使血液中某些成份高于正常,需
与一般病理情况相区别,取血前几日应注意避免。
7. 生理差别的影响:不同年龄组的个体及妇女的妊娠期、月经期,血液成份有一定的生理
差异,应注意与病理情况区别。
8. 葡萄糖耐量测定:试验前三天正常饮食,试验当日清晨空腹抽血 2ml ,并同时留尿。将
100克葡萄糖溶于 300ml 温水中嘱病人一次服下,立即记录时间;然后分别在服糖后 60、
120、 180分钟,各抽血 2ml ,并每次同时留取尿液,注名管号和杯号,立即送检,分别测
定血糖及尿糖。
静脉血液采集作业流程
1. 目的
抽取静脉血标本以做各项检验。
2. 适用范围
适用于本科做生化、免疫、血常规等项目所需血液标本的采集。
3. 物品准备 :止血带、一次性垫巾、无菌棉签、复合碘消毒液、一次性采血针、负压真空
管(数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期及有无漏气) 、试管架、编号笔等。
4. 检验申请单填写要求 :
4.1 检验申请单用钢笔填写,使用正楷字,字迹清楚,填写完整。
4.2 填写内容包括:受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集
年月日时、申请医生及采样者签名。
5. 操作步骤 :
5.1 查对检验申请单、受检者姓名及是否已按医嘱准备,向受检者解释操作目的,以取得合
作。在采血管上贴好与检验申请单相对应的标签。
5.2 选择血管,常用肘窝静脉、肘正中静脉、前臂内侧静脉,小儿可采用颈外静脉、大隐静
脉。
5.3 在穿刺部位肢体下放一次性垫巾、止血带。
5.4 用复合碘棉签消毒穿刺部位。
5.5 在静脉穿刺部位上方 4-7厘米处扎止血带,嘱受检者握紧拳头,使静脉充盈显露。
5.6 穿刺 :推荐使用真空采血技术。 摘掉静脉穿刺针上的保护套, 进行静脉穿刺, 穿刺成功后,
用贴好标签的负压真空管采集静脉血,松开止血带,受检者松拳, 用棉签压住进针处, 拔出
针头,嘱采血对象按压 2-3分钟。
5.7 为受检者整理衣袖。
5.8 采血完毕后,产生的医疗垃圾按规定分类处理。
6. 注意事项
6.1 采血前应核对好姓名和检验项目,明确标本要求。
6.2抗凝管收集血标本后,立即将试管轻轻颠倒 5~6次,使血液与抗凝剂充分混匀。 6.3 一般生化、免疫检验用干燥非抗凝管收集标本,采样量 3-5ml 。若检验项目较多,应适 当增加采样量。
6.4 血常规检验用 EDTAK2抗凝管收集标本,采样量 0.5-1毫升。
6.5 凝血四项、血红蛋白电泳、 3P 试验用枸橼酸钠(0.2ml )抗凝管收集标本,采样量必须 准确,为 1.8ml 。血沉用枸橼酸钠 0.4ml 抗凝,抽血 1.6ml 。
6.6 高铁血红蛋白还原试验(G6PD )以枸橼酸钠 0.2ml 抗凝,另加入葡萄糖 20mg ,抽静脉 血 1.8ml ,混匀。
6.7 糖化血红蛋白测定需用肝素管抗凝。
6.8 血液粘度测定需同时抽取血常规、血沉和肝素抗凝血(5ml )三份样本。
6.9 餐后, 血糖、 血脂可增加而影响测定结果, 故一般应空腹抽血。 有些食物成分:高蛋白、 高脂及饮食可引起血中蛋白、血脂、 尿酸增高; 香蕉、咖啡等可引起尿中儿茶酚胺代谢产物 的测定等。
6.10 药物影响:如异菸肼、庆大毒素、氨芐青毒素可使谷丙转氨酶活性增高、咖啡因可使 胆红素增加。 因此, 建议检查前几天就停止使用有干扰的药物, 且申请单最好能注明近期用 药情况。
7. 标本运输及实验前存放 :低温条件 2-8℃或室温运输, 1小时内送检。 1小时内分离出血 清,室温放置不超过 4小时, 4℃保存不超过 8小时,长时间保存需在冰冻条件下,且只能 冻融 1次。
8. 附加检验项目申请 :
8.1 标本采集送出后需附加检验项目的, 其申请应在标本采集当天上午 11点 30分以前电话 通知实验室。
8.2 附加检验项目申请为本检验科目录外项目的需提前一天与检验科联系, 以便联系其它实 验室进行检测。
9. 其它 :如分析失败,将对同一原始样本进行检验。如仍不能发出报告者,分析原因并告 知受检者重新采样检验。
